Как создать олеогелевые наноэмульсии для повышения биодоступности астаксантина?

 Олеогель - это термически обратимая гелевая система, в которой масло инкапсулировано в трехмерную сетчатую структуру, которая может препятствовать течению жидкого масла и, таким образом, обладает определенными функциональными структурными свойствами[1 -2] . Пищевые олеогели широко используются в пищевой промышленности благодаря своей превосходной пластичности, текстуре, органолептическим свойствам и физической стабильности[3-4] . В связи с относительно низкой доступностью животных жиров и высоким содержанием в них насыщенных жиров, в последние годы пластичность масел часто повышают путем гидрогенизации растительных масел, что может привести к образованию трансжирных кислот (ТЖК), вредных для человека[3 - 5] . Исследования показали, что создание олеогелей с хорошей пластичностью является эффективным способом замены насыщенных жиров и трансжиров. Олеогели не только улучшают пластичность и механические свойства жиров и масел, но и выступают в качестве системы доставки питательных веществ [6]. Физический барьер, обеспечиваемый трехмерной сетчатой структурой олеогелей, может задерживать высвобождение питательных веществ и, таким образом, контролировать их поступление в организм [7].

 

Наноэмульсия - это жидкая фаза, диспергированная в виде нанокапель в другой несмешивающейся жидкой фазе, обычно состоящей из воды, масла и поверхностно-активных веществ (или амфифильных биомолекул, таких как белки, полисахариды и т.д.) [8 - 9]. Наноэмульсии также являются эффективной системой доставки, обладающей такими преимуществами, как высокая безопасность, простота приготовления, улучшенная растворимость и биодоступность липофильных соединений [10 - 11]. Однако обычные наноэмульсии, стабилизированные ПАВ, трудно использовать в пищевых системах из-за соображений безопасности, поэтому для расширения их применения в пищевой промышленности необходимо использовать в качестве эмульгаторов амфифильные биомолекулы пищевого класса.

Хотя олеогели обладают многими преимуществами, их плохая диспергируемость в воде значительно ограничивает их применение. Исследования показали, что олеогелевые наноэмульсии могут значительно улучшить диспергируемость в воде и расширить перспективы применения систем доставки на основе олеогелей. Тем не менее, большинство приготовленных в настоящее время олеогелевых наноэмульсий стабилизируются поверхностно-активными веществами, и лишь немногие специалисты использовали пищевые амфифильные биомолекулы (например, белки) в качестве эмульгаторов для приготовления олеогелевых наноэмульсий. Учитывая, что большинство ПАВ потенциально биотоксичны, необходимо разработать олеогелевые наноэмульсии, стабилизированные белками.

 

Астаксантин является одним из видов жирорастворимых каротиноидов, и астаксантин обладает целым рядом полезных эффектов, таких как гипогликемический, гиполипидемический, укрепляющий иммунитет, противораковый и так далее[12 -13] . Однако физико-химические свойства астаксантина крайне нестабильны, он легко окисляется и разлагается под действием света, поэтому сохранить его активность довольно сложно[14] . Кроме того, предыдущие исследования нашей группы показали, что биодоступность астаксантина низкая[12] . Поэтому мы приготовили загруженные астаксантином олеогелевые наноэмульсии путем встраивания астаксантина в олеогель и использования двух белков в качестве эмульгаторов инновационным способом. Биодоступность астаксантина в олеогеле и олеогелевых наноэмульсиях была исследована путем имитации пищеварения in vitro, что создает теоретическую основу для разработки новых продуктов с использованием астаксантина в качестве функционального вещества и способствует высокому использованию астаксантина.

 

1 Материалы и методы

1. 1 Экспериментальные материалы

1. 1. 1 Материалы

Кукурузное масло, Guangdong Tasty Fresh Seasoned Food Co., Ltd; Канделильский воск, Shanghai Aladdin Biochemical Technology Co. Метил-трет-бутиловый эфир, метанол, гексан, ацетон, NaCl, Sinopharm Chemical Reagent Co.

1. 1. 2 Приборы

 

Масляная баня ZNCL-G190 × 90, Gongyi Yingyu Gaoke Instrument Factory; Высокоскоростная замораживающая центрифуга TGL-20M, Changsha Xiangyi Centrifuge Instrument Co. FTC; реометр Rhemeter MCR301, Anton Paar, Австрия; вихревой осциллятор, Haimen Qilinbel Instrument Manufacturing Co.

 

1. 2 Методика проведения эксперимента

1. 2. 1 Определение критической гелеобразующей концентрации малых свечных восков

Для определения критического минимального количества канделильского воска был использован метод SHAIKH et al[15]. Взвешивалась определенная масса кукурузного масла, к которой добавлялись воски (1,0%, 1,1%, 1,2%, 1,5% и 2,0% по массе, соответственно) и нагревались на масляной бане при 80 ℃ с перемешиванием до полного растворения. После охлаждения до комнатной температуры образец хранили при 4 ℃ в течение 24 ч для образования олеогеля. Приготовленный олеогель переворачивали при комнатной температуре и наблюдали за текучестью образца, чтобы определить, образовался ли олеогель или нет, при этом текучий образец считался негелевым, а нетекучий - гелевым.

 

1. 2. 2 Влияние добавления канделильского воска на температуру фазового перехода геля

Возьмите небольшие образцы геля из свечного воска массовой долей 1. 2% и 2. 0%, в масляной бане медленно нагревайте, пока образцы не начнут течь, записывайте температуру в это время, то есть температуру фазового перехода геля.

 

1. 2. 3 Влияние добавления канделильского воска на текстуру олеогеля

Твердость и эластичность образцов олеогелей определяли с помощью масс-спектрометра при комнатной температуре с использованием 1,2% и 2,0% свечного воска соответственно. Твердость и эластичность олеогелей определяли с помощью текстурного анализатора при комнатной температуре. Испытание проводили в режиме TPA, зонд вдавливали в образцы со скоростью 30 мм/мин, среднее значение получали после трехкратного повторения испытания для каждого образца.

 

1. 2. 4 Определение реологического поведения

Сканирование деформации: Сканирование деформации проводилось для определения линейной вязкоупругой области небольших масляных гелей свечного воска перед проведением реологических испытаний. Условия испытания: частота сдвига поддерживалась постоянной на уровне f = 1 Гц, использовался зонд PP50 с зазором 1 мм, температура испытания была комнатной. Соответствующее количество образца олеогеля помещалось на образец, и измерение начиналось после 5 минут стабилизации для получения спектров вязкоупругости, соответствующих напряжению сдвига в диапазоне 0,001%~10%.

Частотное сканирование: При постоянном низком уровне деформации (0,1%) в линейной вязкоупругой области и в диапазоне частот 0,5-20 Гц образцы подвергались частотному сканированию для получения частотно-зависимых модуля сохранения (G′ ) и модуля сдвига (G″ ).

 

1. 2. 5 Приготовление олеогелевых наноэмульсий с добавлением астаксантина

Приготовление белкового раствора: растворите определенную массу сывороточного изолята белка и альбумина куриного яйца в сверхчистой воде, доведите массовую концентрацию до 50 мг/мл и отрегулируйте pH до 3,0 с помощью разбавленной соляной кислоты.

Приготовление наноэмульсий олеогеля, загруженного астаксантином: кукурузное масло и канделильский воск (2,0% по массе) нагревали на масляной бане при 80 ℃ до расплавления, затем добавляли определенное количество астаксантина (1 мг астаксантина добавляли к 1 г олеогеля) и нагревали до полного растворения астаксантина. В то же время раствор белка нагревали до 80 ℃. После этого система свечной воск/кукурузное масло была вылита в горячий белковый раствор, пока он был еще горячим (1∶9, v/v), и смесь была помещена в ультразвуковую дробилку с амплитудно-переменным стержнем Φ6 и мощностью 630 Вт, и ультразвуковое эмульгирование проводилось в течение 5 минут для получения наноэмульсий олеогеля.

 

1. 2. 6 Размер частиц наноэмульсии, ζ-потенциальное определение

Размер частиц эмульсии и ζ-потенциал определяли с помощью потенциостата Malvern для определения размера наночастиц. Перед измерением эмульсию разбавляли в 100 раз сверхчистой водой с pH 3, а затем заливали в ячейку для определения размера частиц и ячейку потенциостата для измерения. Для каждого образца было сделано три повтора и взято среднее значение.

 

1. 2. 7 Приготовление гелевых наноэмульсий астаксантинового масла с нагрузкой и моделирование переваривания in vitro

Моделируемое сбраживание частично повторяет метод, описанный в работах [16 - 18], с некоторыми улучшениями.

Имитация желудочного пищеварения: имитация желудочной жидкости была приготовлена путем добавления 2 г NaCl к 1 л сверхчистой воды и регулировки pH до 1,2 с помощью разбавленной соляной кислоты. Образец, содержащий 2 г кукурузного масла (гель канделильского масла и наноэмульсия олеогеля с астаксантином), смешивали с 16 мл желудочной жидкости и нагревали при 37 ℃ с перемешиванием на масляной бане с постоянной температурой. Пепсиновое переваривание начинали, наливая 4 мл свежерастворенного пепсина в смоделированную желудочную жидкость, конечная концентрация пепсина составляла 1,6 мг/мл по массе, пепсин инактивировали, отрегулировав рН до 7,5 после переваривания в течение 2 ч. Переваривание прекращали, отрегулировав рН пепсина до 7,5.

Имитация энтерального пищеварения: 10 ммоль/л CaCl2 и 10 мг/мл желчной соли свиной желчи растворяли в трис-малеатном буфере и доводили pH до 7,5 для получения имитации энтерального раствора. Трипсин добавляли в смоделированный энтеральный раствор, чтобы массовая концентрация трипсина составляла 3,2 мг/мл, и гастропереваренные образцы смешивали с равным объемом смоделированного энтерального раствора для начала энтерального пищеварения и выдерживали в масляной бане при 37 ℃ в течение 120 мин. Во время процесса энтерального пищеварения 0,25 моль/л NaOH добавляли вручную, чтобы поддерживать pH смоделированного энтерального раствора на уровне 7,5, и количество NaOH, добавляемого со временем, регистрировали в течение всего процесса энтерального пищеварения. Количество NaOH, добавляемого с течением времени, регистрировалось в течение всего процесса переваривания. После переваривания образцы центрифугировали при 11 000 об/мин в течение 45 минут и разделили на верхнюю масляную фазу, среднюю осветленную мицеллярную фазу и нижний нерастворимый осадок. Среднюю мицеллярную фазу собирали и определяли содержание астаксантина.

 

Сбраживание кукурузного масла исследовалось путем наблюдения за выделением свободной жирной кислоты (СЖК). 1 моль кукурузного масла выделяет 2 моль СЖК, затем расходуется 2 моль NaOH, поэтому доля выделившейся СЖК рассчитывалась согласно уравнению (1): 1 моль кукурузного масла выделяет 2 моль СЖК, а затем расходуется 2 моль NaOH, поэтому доля выделившейся СЖК рассчитывалась согласно уравнению (1): 1 моль кукурузного масла выделяет 2 моль СЖК.

 

Где :CNaOH - концентрация NaOH, моль/л; VNaOH - объем NaOH, нейтрализующего свободный FFA, л; M кукурузного масла - молекулярная масса кукурузного масла, г/моль; mNaOH - исходная масса кукурузного масла, г.

Экстракция астаксантина: был использован и усовершенствован метод Юань Си и др[19]. Возьмите 5 мл собранной промежуточной мицеллярной фазы, добавьте смесь [V(н-гексан):V(ацетон) = 1:1] и встряхивайте в течение 30 с. Центрифугируйте в течение 5 мин при 4000 об/мин, чтобы собрать верхний слой жидкости, а затем повторяйте вышеуказанную операцию, пока верхний слой жидкости не станет бесцветным, и затем все супернатанты объедините. Собранный супернатант продували азотом до полного испарения органического растворителя, затем растворяли в 1 мл раствора [V(метанол):V(метил-трет-бутиловый эфир) = 1 ∶ 1], фильтровали через 0,45-мкм мембрану и затем количественно анализировали на наличие астаксантина с помощью высокоэффективной жидкостной хроматографии (ВЭЖХ). Биодоступность астаксантина рассчитывалась по уравнению (2).

Биодоступность/% = × 100 (2)

Условия высокоэффективной жидкостной хроматографии (ВЭЖХ): колонка: YMC-C30 (4,6 мм × 250 мм, 5 мкм); подвижная фаза A: метанол; подвижная фаза B: третичная метиловая группа; подвижная фаза B: третичная метиловая группа; подвижная фаза B: третичная метиловая группа; подвижная фаза B: третичная метиловая группа; подвижная фаза B: третичная метиловая группа.

Бутиловый эфир; процедура градиентного элюирования: 0 ~ 10 мин, 10% B; 10

30 мин, 60% B; 30 ~ 40 мин, 10% B. Скорость потока 1 мл/мин; длина волны детектирования 476 нм; объем инжекции 30 мкл.

 

2 Результаты и анализ

2.1 Минимальные добавки канделильского воска

Кукурузное масло богато ненасыщенными жирными кислотами и витамином Е. Ежегодное потребление кукурузного масла в Китае превышает 1,2 миллиона тонн, и кукурузное масло используется для приготовления олеогелей. В данном исследовании мы сначала изучили олеогель, чтобы выяснить свойства олеогеля, изготовленного из канделильского воска и кукурузного масла, и улучшить свойства наноэмульсии, приготовленной на основе олеогеля. Образцы олеогеля были перевернуты для определения минимального количества канделильского воска, добавляемого при формировании олеогеля. Из рис. 1 видно, что олеогель течет при массовой доле канделильского воска 1,0% и 1,1%, и не течет при массовой доле канделильского воска ≥1,2%, и можно предположить, что минимальное количество канделильского воска для образования олеогеля с кукурузным маслом составляет 1,2%. Согласно предыдущим исследованиям, чем меньше минимальное добавление желирующего агента требуется для образования олеогеля, тем сильнее желирующая способность желирующего агента. Большинство желирующих агентов имеют минимальную дозировку 2,0%[20], поэтому канделильский воск является желирующим агентом с сильной желирующей способностью. Свойства олеогелей обычно зависят от количества добавленного желирующего агента, который, в свою очередь, влияет на свойства коллоидной системы на основе олеогеля. Чтобы определить оптимальную концентрацию желирующего агента для приготовления олеогелевых наноэмульсий, в последующих экспериментах по определению характеристик олеогелей использовались две репрезентативные массовые доли желирующего агента - 1,2% и 2,0%.

 

2.2 Влияние массовой доли мелкого канделильского воска на точку перехода в гель

Как показано на рис. 2, точки гелеобразования масляных гелей с 1,2% и 2,0% массовой доли канделильского воска составляли 40 и 48 ℃, соответственно. Увеличение массовой доли канделильского воска оказывало значительное влияние на точку гелеобразования, и чем выше массовая доля, тем выше точка гелеобразования. Чем выше массовая доля, тем выше точка перехода геля. Это может быть связано с межмолекулярной водородной связью, при увеличении массовой доли канделильского воска межмолекулярная водородная связь также увеличивается, а межмолекулярная сила увеличивает тепло, необходимое для плавления геля, поэтому температура точки перехода геля также увеличивается[21].

 

2.3 Влияние массовой доли канделильского воска на текстуру масляных гелей

На рисунке 3 показано влияние массовой доли канделильского воска на твердость и эластичность олеогеля. Твердость и эластичность олеогелей, полученных в результате измерений методом TPA, были выше при добавлении канделильского воска. Это объясняется тем, что при добавлении канделильского воска количество и плотность трехмерной сетевой структуры также увеличиваются, что повышает твердость и эластичность олеогеля. Судя по величине увеличения, увеличение твердости было геометрическим, в то время как увеличение эластичности было менее чем в 2 раза, поэтому видно, что увеличение массовой доли канделильского воска в основном влияло на твердость олеогеля. Более высокая твердость олеогеля свидетельствует о том, что структура геля более компактна.

 

2.4 Реологическая характеристика масляных гелей

По результатам сканирования деформации была определена линейная вязкоупругая область олеогеля свечного воска, а затем деформация была зафиксирована на уровне 0,1%. Как видно из рис. 4, G′ значительно превышает G″ для системы олеогеля во всем диапазоне сканирования. Поскольку модуль упругости G′ и модуль сдвига G″ представляют собой упругую и вязкую части системы, G′ > G″ указывает на то, что в образце сформировалась гелевая структура. При увеличении массовой доли канделильского воска G′ значительно возрастает, что указывает на то, что чем больше массовая доля канделильского воска, тем более компактной является гелевая сетевая структура олеогеля, что согласуется с результатами текстурного анализа.

Согласно результатам характеризации вышеуказанных олеогелей, свойства олеогелей с 2,0% канделильского воска были лучше, чем у олеогелей с 1,2% канделильского воска, по температуре фазового перехода геля, текстуре и реологии. Поэтому при последующем приготовлении наноэмульсий использовался олеогель с массовой долей канделильского воска 2,0%, что благоприятно сказывалось на стабильности наноэмульсий.

 

2. 5 Строение, размер частиц и ζ-потенциал олеогелевых наноэмульсий

Трехмерная сетевая структура олеогеля оказывает благоприятное воздействие на эмульсию, поэтому олеогель используется в качестве базового масла для приготовления наноэмульсий. Когда эмульсия сформирована, трехмерная сетевая структура олеогеля может быть перенесена в эмульсию, что делает эмульсию более стабильной и трудноразрушимой. Поскольку амфифильные пищевые белки могут эффективно адсорбироваться на границе раздела фаз масло-вода и эффективно способствовать образованию и стабилизации эмульсий[22 - 24], амфифильные пищевые белки использовались для стабилизации олеогелевых наноэмульсий в данном исследовании. Поскольку физико-химические свойства эмульсий тесно связаны с типами эмульгаторов, для стабилизации олеогелевых наноэмульсий были выбраны белок сывороточного изолята и альбумин яичного белка, чтобы исследовать различия между разными эмульгаторами в стабилизации олеогелевых наноэмульсий.

На рисунке 5 показаны образцы олеогеля, нагруженного астаксантином, и двух видов олеогелевых наноэмульсий. Олеогель, нагруженный астаксантином, имеет темно-красный цвет, а два вида эмульсий - светло-желтый. Два вида олеогелевых наноэмульсий обладают определенной степенью подвижности и представляют собой эмульсии "масло в воде", которые могут быть диспергированы в воде. Наноэмульсии альбумина яичного белка легко пенятся, и некоторые из них после ультразвукового воздействия будут в виде пены, и их необходимо оставить на некоторое время, прежде чем они перейдут в жидкое состояние.

 

Как показано в таблице 1, при одинаковом pH и концентрации белка наноэмульсии с белком сывороточного изолята в качестве эмульгатора имеют меньший размер частиц, чем альбумин яичного белка, и наноэмульсии с меньшим размером частиц обладают большей стабильностью. Разница в размере частиц двух типов эмульсий может быть связана с различием амфифильных и межфазных свойств двух белков[25-26], которые могут достигать различных равновесий в эмульсиях и таким образом влиять на формирование и стабилизацию эмульсий. ζ-потенциал эмульсий, стабилизированных белками, также оказывает определенное влияние на стабильность эмульсий. Чем дальше ζ-потенциал эмульсии от изоэлектрической точки белка, тем стабильнее эмульсия. Чем выше ζ-потенциал, тем выше электростатическое отталкивание между каплями, тем выше устойчивость эмульсии к агрегации и флокуляции, а размер капель остается практически неизменным[27] . ζ-потенциал альбумина яичного белка низок, поэтому электростатическое отталкивание между каплями невелико, и капли легко притягиваются друг к другу, что приводит к увеличению размера частиц эмульсии, и в конечном итоге эмульсия может быть разрушена.

 

2. 6 Липолиз олеогелевых наноэмульсий

Имитация переваривания липидов in vitro может быть определена путем анализа распада липидов. Как показано на рис. 6, высвобождение свободных жирных кислот из олеогеля составило менее 2 %, в то время как высвобождение свободных жирных кислот из двух наноэмульсий олеогеля было выше, чем из олеогеля, что указывает на более интенсивный липолиз липидов в наноэмульсиях, а высвобождение свободных жирных кислот из наноэмульсий, стабилизированных сывороточным изолятом, было выше, чем из эмульсий, стабилизированных альбумином яичного белка. На перевариваемость липидов в наноэмульсиях и олеогелях могут влиять несколько факторов: во-первых, наноэмульсии легче диспергируются в моделируемой кишечной жидкости и, таким образом, имеют большую поверхность контакта с протеазой, в то время как олеогели обладают низкой диспергируемостью в моделируемой кишечной жидкости и имеют большие куски олеогеля, взвешенные на поверхности пищеварительного раствора, которые не способствуют адекватному контакту между масляной фазой и протеазой; во-вторых, из-за меньшего размера частиц наноэмульсий белка изолята сыворотки, их межфазная площадь больше, чем у эмульсий, стабилизированных альбумином яичного белка. Во-вторых, из-за меньшего размера частиц наноэмульсии белка изолята молочной сыворотки ее межфазная площадь больше, чем у наноэмульсии альбумина яичного белка, а межфазная площадь двух наноэмульсий намного больше, чем у олеогеля, поэтому большая межфазная площадь может помочь увеличить площадь контакта между маслом и желудочной жидкостью и, таким образом, ускорить липолиз.

 

2.7 Биодоступность астаксантина

Как показано на рис. 7, биодоступность астаксантина в двух олеогелевых наноэмульсиях была значительно выше, чем в олеогеле, а биодоступность астаксантина в наноэмульсии сывороточного изолята белка была выше, чем в альбумине яичного белка, что можно объяснить степенью липолиза в олеогеле и наноэмульсии. Свободные жирные кислоты, образующиеся при переваривании липидов, могут образовывать мицеллы, и гидрофобный астаксантин усваивается организмом в основном за счет солюбилизации этих мицелл жирных кислот. После моделирования желудочно-кишечного пищеварения в олеогелевой наноэмульсионной системе образовалось больше свободных жирных кислот, что привело к образованию большего количества мицелл жирных кислот и большей солюбилизации астаксантина, тем самым увеличив биодоступность астаксантина. Очень важно изучить биодоступность астаксантина, которая в предыдущем исследовании [12] составляла менее 5%, но в олеогелевой наноэмульсии, стабилизированной белком сывороточного изолята, биодоступность астаксантина достигла 43,6%, увеличившись почти на 40%, что свидетельствует о том, что олеогелевая наноэмульсионная система может быть использована в качестве отличной системы доставки питательных веществ с высокой биодоступностью. Биодоступность астаксантина

 

3 Заключение

В данном исследовании минимальная массовая доля канделильского воска, необходимая для образования олеогеля, составляла 1,2%. В результате серии исследований, характеризующих точку перехода в гель, твердость и реологию олеогеля с канделильским воском, результаты показали, что физико-химические свойства олеогеля с массовой долей канделильского воска 2% были лучше, чем с массовой долей 1,2%, что свидетельствует о том, что увеличение содержания канделильского воска может помочь улучшить точку перехода в гель, твердость и реологические свойства олеогеля в диапазоне определенных массовых долей. Результаты показали, что эмульсия группы белков сывороточного изолята имеет меньший размер частиц, более высокий ζ-потенциал и более высокую стабильность; моделирование переваривания in vitro олеогеля и наноэмульсии с добавлением астаксантина показало, что скорость липолиза наноэмульсии была выше, и скорость липолиза астаксантина в системе олеогель-наноэмульсия была выше, чем в наноэмульсии; и наноэмульсия астаксантина в системе олеогель-наноэмульсия была лучше, чем в наноэмульсии. Биодоступность астаксантина в эмульсионной системе была намного выше, чем в масляном геле. Кроме того, масляно-гелевая эмульсия, стабилизированная белком сывороточного изолята, показала более высокий липолиз и биодоступность, чем масляно-гелевая наноэмульсия, стабилизированная альбумином яичного белка. Настоящее исследование предлагает новую идею эффективного использования астаксантина, которая в будущем может найти применение в пищевой промышленности.

 

Ссылки:

[1] YANG S S, YANG G L, LIU W, et al. Исследование термических свойств и поведения кристаллизации соевого олеогеля, сформированного с использованием моно-опальмитата и карнаубским воском [ J]. Journal of Henan University of Technology (Natural Science Edition), 2020, 41(5) :9 - 15.

[2] XU J, SUN H, ZHANG G H, et al. Приготовление и свойства олеогелей на основе масла грецкого ореха[J]. Пищевая и ферментационная промышленность, 2020, 46(5) :188 - 193.

[3] CHAVES K F,BARRERA-ARELLANO D,RIBEIRO A P B. Poten- tial application of lipid organogels for food industry[J]. Food Re- search International, 2018 ,105 :863 -872.

[4] PATEL A R,DEWETTINCK K. Структурирование пищевого масла: обзор и последние обновления[J]. Food & Function, 2016, 7 :20 -29.

[5] WEI Z H, HUANG Q R. Разработка эмульсий Пикеринга на основе органогеля с улучшенной стабильностью при замораживании-оттаивании и биоак-кумуляцией гесперидина[J]. Food Hydrocolloids, 2019, 93 :68 -77.

[6] SIRAJ N,SHABBIR M A,AHMAD T,et al. Органогеляторы как заменитель насыщенных жиров для структурирования пищевых масел[J]. International Jour- nal of Food Properties, 2015 ,18(9) :1 973 - 1 989.

[7] WAN W B. Исследование получения и свойств органогеля с куркумином[D]. Гуанчжоу :Южно-Китайский технологический университет, 2016.

[8] XIAO J X. Влияние типа поверхностно-активного вещества на свойства и стабильность наноэмульсии[J]. Detergent & Cosmetics, 2020, 43(8) :9 - 12.

[9] JIN X Y, LIU Y F. Исследование получения наноэмульсии лютеина с помощью процесса микрофлюидизации под высоким давлением и ее стабильности[J]. Китайские пищевые добавки, 2020, 31(10) :1 -5.

[10] DING L J,HUANG Z H,LIU D. Приготовление наноэмульсии дигидромирицетин- Ag+ и ее ингибирующий эффект и механизм на Staphylococcus aureus[J]. Food Science, 2020, 41(15) :48 -53.

[11] LI C Y, DOU Z Y, ZHANG L P, et al. Влияние масла-носителя на физико-химическую стабильность и биодоступность наноэмульсии кверцетина [J/OL]. Food Science, https://kns. cnki. net/kcms/detail/11.

2206. ts. 20200924. 1612. 096. html.

[12] YUAN S H, ROBERT W L, LIU F, et al. Липидная эмульсия астаксантина улучшает структуру и дисфункцию микробиоты кишечника, вызванную диетой с высоким содержанием жиров [ J]. Наука и технология пищевой промышленности, 2021, 42(2) :63 -69

[13] QI Y, JIA Z, SONG R. Анализ извлечения и характеристики астаксантина, полученного из различных частей Litopenaeus vannamei [J]. Журнал сельскохозяйственных наук Аньхой, 2020, 48(18) :188 - 190;193.

[14] HAN Q Q,JIANG X Y,HUANG X. Приготовление сухой эмульсии астаксантина[ J]. Современное профессиональное образование, 2020 ( 30 ) : 178 - 179.

[15] SHAIKH I M, JADHAV S L, JADHAV K R, et al. Aceclofenac or- ganogels: In vitro and in vivo characterization [J]. Current Drug De- livery, 2009, 6(1) :1 -7.

[16] WEI Z H, CHENG Y J, ZHU J Y, et al. Genipin-crosslinked ovo- transferrin particle-stabilised Pickering emulsions as delivery vehi- cles for гесперидина[J]. Food Hydrocolloids, 2019, 94 :561 -573.

[17] WEI Z H, ZHANG H W, HUANG Q R. Нагруженная куркумином пикеринговая эмульсия, стабилизированная нерастворимыми комплексами с участием овотрансферрина и галловой кислоты. конъюгатов овотрансферрина и галловой кислоты и карбоксиметилдекстрана[J]. Food & Func- tion, 2019 ,10(8) :4 911 -4 923.

[18] WEI Z H, HUANG Q R. Разработка эмульсий с высокой внутренней фазой Pick- ering, стабилизированных частицами овотрансферрина и камеди арабика, в качестве средств доставки куркумина. транспортных средств[J]. International Journal of Food Sci- ence & Technology, 2020, 55(5) :1 891 - 1 899.

[19] YUAN X, LIU X J, CAO Y. Влияние размера частиц вспомогательной эмульсии и бланширования на биодоступность β-каротина из спин- ach[J]. Food Science, 2019, 40(21) :78 -87.

[20] ZHONG J F,QIN X L,LIU X. Достижения в области олеогелей и их применения в пищевой промышленности[J]. Food Science, 2015, 36(3) :272 - 279.

[21] WU F, WANG W N, YU Y, et al. Приготовление масляного геля на основе рисового масла из воска сахарного тростника и его свойства[J]. Food Sci- ence, 2021, 42(2) :17 -22.

[22] WEI Z H,GAO Y X. Достижения в применении биополимерных ам- фифилов в нутрицевтических системах доставки[J]. Food Science and Technology, 2014, 39(10) :84 -89.

[23] LU M W, CAO Y, HO C H, et al. Разработка наноэмульсии капсаицина на основе органогеля с улучшенной биодоступностью и сниженным раздражением слизистой оболочки желудка. раздражения слизистой желудка [ J]. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 2016 , 64(23) :4 735 -4 741.

[24] WEI Z H. Получение, структурная характеристика и функциональная оценка ком-плексов молочного белка-EGCG и хитозана-хлорогеновой кислоты [D]. . Beijing:China Agricultutural University, 2015.

[25] DAVIS J P,FOEGEDING E A. Сравнение пенообразующих и ин-терфасных свойств изолята сывороточного белка и белков яичного белка [J]. Colloids and Surfaces B :Biointerfaces, 2007, 54(2) :200 - 210.

[26] YANG X,FOEGEDING E A. Влияние сахарозы на пены из про- теина яичного белка и изолята сывороточного протеина: факторы, определяющие свойства влажных и сухих пен ( пирожных) [J]. Food Hydrocolloids, 2010, 24(2) :227 -238.

[27] WEI Z H, YANG W, FAN R, et al. Оценка структурных и функциональных свойств комплексов белок - EGCG и их способность стабилизировать модель β- каротиновой эмульсии[J]. Food Hydrocol- loids, 2015 ,45 :337 -350.